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CAPÍTULO 24 

QUÍMICA CLÍNICA

Tabla 24.2

Algunos procedimientos de análisis clínicos

 Muestra

Sustancia determinada 

analizada

a

 

Método de medición 

Principio

Ácido úrico 

Suero 

Espectrofotometría 

 Filtrado libre de proteína con ácido túngstico; oxidar 

con fosfotungstato alcalino y medir el producto de 

reducción de fosfotungstato azul a 680 nm

Azúcar (glucosa) 

Sangre o suero 

Espectrofotometría 

 Filtrado libre de proteína con Ba(OH)

2

-ZnSO

4

; oxidar 

el azúcar con Cu(II) alcalino para formar Cu

2

O; el 

Cu

2

O se determina permitiéndole reducir el ácido 

fosfomolíbdico para formar azul de molibdeno, que 

se mide a 420 nm, o hacer reaccionar el azúcar con 

o-toluidina y medir a 635 nm

Barbituratos 

Suero 

Espectrofotometría de ultravioleta 

 Se extrae barbiturato en CHCl

3

, se vuelve a extraer en 

solución de NaOH y se mide la absorción UV a pH 

alcalino a 252 nm

Calcio 

Suero 

Espectrometría de absorción 

Se diluye 1:20 con Na

2

EDTA 10 000 ppm

 

 

    atómica 

  y se mide la absorbancia a 422.7 nm

Cloruro 

Suero 

Volumétrico; culombimétrico 

Titulación con Ag

 o Hg(II)

Creatinina Suero 

Espectrofotométrico 

 

El filtrado libre de proteína (ácido tricloroacético) 

reacciona con picrato alcalino y se mide la 

absorbancia a 490 nm

Dióxido de carbono 

Suero 

Manométrico; electrodo 

Método manométrico de Van Slyke; electrodo de CO

2

Fosfatasa ácida 

Suero 

Espectrofotometría 

 Incubar con glicerofosfato de sodio durante 1 h a pH 

de 4.9 para liberar fosfato; determinar fosfato como 

con fósforo inorgánico

Fosfatasa alcalina 

Suero 

Espectrofotometría 

Lo mismo, pero incubar a pH 9.6

Fósforo inorgánico 

Suero 

Espectrofotometría 

 Filtrado libre de proteína (ácido tricloroacético); hacer 

reaccionar con Mo(VI) para formar ácido 

fosfomolíbdico y reducirlo a azul de molibdeno. 

Medir absorbancia a 660 nm

Hierro 

Suero 

Espectrofotometría de 

El hierro en el filtrado libre de proteína se reduce

 

 

    absorción atómica 

   a Fe(II) y se compleja con batofenantrolina; se 

mide la absorbancia a 535 nm

Magnesio 

Suero 

Espectrofotometría de 

Diluir 1:20 con Na

2

EDTA al 1% y medir 

 

 

    absorción atómica 

  la absorbancia a 285.2 nm

Nitrógeno de urea (BUN) 

Sangre 

Espectrofotometría (enzimático) 

 Filtrado libre de proteína con ácido túngstico; incubar 

con enzima ureasa a pH 6.8 para producir NH

3

determinar el NH

3

 con el reactivo de Nessler

Nitrógeno no proteico 

Sangre 

Espectrofotometría 

Digerir el filtrado libre de proteína para formar

  (NPN) 

 

 

   

NH

4

HSO

4

, adicionar yoduro mercúrico alcalino 

(reactivo de Nessler) para complejar el amoniaco y 

medir la absorbancia a 480 nm

Potasio 

Suero 

Fotometría de fl ama; electrodo 

 Diluir 1:50 con NaCl 0.15 M y medir a 766 nm; 

electrodo sensible al ion K

 

Proteína total 

Suero 

Espectrofotometría 

 Reactivo de biuret (tartrato de cobre alcalino); forma 

un complejo con las proteínas; medir absorbancia a 

550 nm después de 30 min

Salicilato Suero 

Espectrofotometría 

 

Formar complejo con nitrato férrico en solución ácida 

y medir absorbancia a 535 nm

Sodio 

Suero 

Fotometría de flama; electrodo 

 Diluir 1:50 y medir a 589 nm; electrodo sensible a 

ion Na

 

Yodo unido a proteína 

Suero 

Espectrofotometría (catalítico) 

Precipitar proteínas con ácido tricloroacético, reducir

    (PBI) 

 

 

   a cenizas o digerir la proteína y medir el efecto ca-

talítico de I

 sobre la velocidad de la reacción entre 

Ce(IV) y As(III) midiendo la absorbancia de 

Ce(IV) a 420 nm pasados 20 min

a

 S, suero; B, sangre.

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