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Quimica Analitica

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Soluciones y reactivos requeridos

1.  Suministrados.  Rojo de fenol (fenolsulfonftaleína) al 0.1% en NaOH 0.003 M; so-

lución salina al 1% (NaCl) en agua libre de CO

2

 (vea el experimento 6); antifoam A 

(Dow Corning Corp.).

2.  Preparados.  Soluciones estándar de HCl 0.1 M y 0.01 M, y de NaOH 0.01 M. Para 

conocer la molaridad de la solución valorada de HCl y la de NaOH, sólo bastan tres 

cifras significativas. Si usted preparó HCl o NaOH estandarizado en el experimento 

6 o 7, úselo en este experimento. Si no, prepare 250 mL de solución estandarizada 

de NaOH 0.1 M como en el experimento 6. Ya que sólo se requieren tres cifras sig-

nificativas, podrá usar la décima parte de la cantidad de KHP para la titulación, en 

cuyo caso el punto final se presentará más o menos de los 4.0 a los 4.5 mL. En estas 

titulaciones debe usar una bureta de 10 mL. Estandarice una solución de HCl 0.1 M 

titulando 5.00 mL de ésta con estándar de NaOH 0.1 M, como en el experimento 7. 

Se podrá usar el indicador de rojo de fenol. Si sólo tiene una solución estándar de 

HCl 0.1 M, úsela para estanzarizar la solución de NaOH 0.1 M.

 

 

Prepare 500 mL de HCl 0.01 M y NaOH 0.01 M diluyendo 50 mL de las solu-

ciones 0.1 

M

 a 500 mL con la solución salina. Deben prepararse el día que se vayan 

a usar. La solución salina ayuda a volatilizar el CO

2

 de la solución acidulada al dis-

minuir la solubilidad del gas.

Antes del experimento

Prepare y estandarice las soluciones de HCl 0.1 M y NaOH 0.1 M. Para ello se necesitará se-

car antes un estándar primario de KHP, si no hay disponible HCl o NaOH estandarizados.

Procedimiento

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1.  Preparación de la muestra.  Para la determinación se podrá usar suero o plasma 

(oxalatado o heparinizado). Puede tratarse de sangre recién tomada de un animal. No 

lo haga usted; el profesor le dará la muestra. Una muestra de 10 a 15 mL (20 a 30 

mL de sangre entera) deben bastar para determinaciones por triplicado en un grupo 

de 30 estudiantes. Debe agregarse fluoruro para evitar la glucólisis, o descomposi-

ción de la glucosa, que puede hacer variar el pH. El fluoruro inhibe la catálisis enzi-

mática que causa la glucólisis y estabiliza el pH durante unas 2 h. El tubo usado para 

recolectar la muestra se puede lavar con una solución de 100 mg de heparina de sodio 

más 4 g de fluoruro de sodio por 100 mL. La muestra debe conservarse en me-

dio anaerobio, es decir, con tapón para aislarla del CO

2

 atmosférico. Como el análisis 

debe hacerse el día en que se toma la sangre, las soluciones deben prepararse con el 

tiempo suficiente.

2.  Preparación de la solución de comparación.  Prepare un estándar para comparar 

colores en el punto final como sigue. Coloque 6 mL de solución salina al 1% en un 

matraz Erlenmeyer y añada 0.10 mL de suero o de plasma. Agregue dos gotas de 

indicador de rojo de fenol, inserte un tapón y agite vigorosamente para mezclar el 

contenido. El intervalo de pH de transición de este indicador es de 8.4 a 6.7 (amarillo 

a rojo). Debido a la capacidad amortiguadora de la sangre, el punto final se presenta 

en este intervalo.

3.  Titulación de la muestra.  La muestra del fondo común de suero o plasma se habrá 

preparado tocando con el extremo de una varilla de agitación un poco de Antifoam 

A y girándolo en la muestra. De ese modo se evitará el exceso de producción de 

9

 Esta determinación puede llevarse a cabo a macroescala, usando 5.00 mL de ácido y 1.00 mL de muestra, o usando 

2.00 mL de ácido y 0.500 mL de muestra. En el primer caso, en la retrotitulación se necesitarán unos 2.4 mL de 

NaOH 0.01 M, y en el último caso 0.7 mL, aproximadamente.

TITULACIONES ÁCIDO-BASE

 

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